La Resonancia Magnética Nuclear (RMN) es una técnica espectroscópica clave en las ciencias básicas y aplicadas. Su importancia radica en la capacidad de señalar con precisión el tipo y la cantidad de átomos que componen una molécula. La técnica se basa en el estudio del comportamiento de los núcleos de los átomos dentro de un campo magnético frente a un pulso de radiofrecuencia. El diseño de secuencias de pulso ad hoc permite determinar con un alto grado de certeza la estructura de una molécula en un amplio rango de pesos moleculares, que incluye desde metabolitos hasta macromoléculas como proteínas, cadenas de ácidos nucleicos, polisacáridos y complejos macromoleculares diversos. En este proyecto la RMN será aprovechada en el ámbito de las ciencias de los alimentos y de la salud, abordando dos tipos de escenarios, el de los metabolitos (moléculas de bajo peso molecular) y el de las macromoléculas (polinucleótidos y proteínas) Estudios de metabolómica serán desarrollados para distinguir entre especies de plantas (Vanilla sp) [1,2] para certificar una denominación de origen y calidad de granos de café [3], para evaluar y cuantificar el valor nutritivo, calidad e inocuidad de alimentos como el aguaymanto, papa y cochinilla, así como también, en escenarios más complejos, para diagnosticar y tratar enfermedades (desarrollo de resistencia a fármacos en tuberculosis). Asimismo, la RMN será utilizada en el estudio estructural de distintos complejos moleculares. En en ámbito de las ciencias de los alimentos se abordarán complejos aptaméricos (cadenas cortas de ADN/ARN) en un afán de reforzar el área de desarrollo de sensores selectivos por OTA [4-6] que actualmente se aborda en PUCP mediante espectroscopía Raman. En el terreno de las ciencias de la salud, dado que se conoce que las FKBPs juegan un rol importante en el funcionamiento celular -señalización y plegamiento de proteínas [7-9]- se determinará la estructura de la FKBP de T. cruzi, la TcMIP [10-12]. La información obtenida será empleada en la búsqueda racional de inhibidores de la TcMIP, en un esfuerzo por combatir la tripanosomiasis americana, mal endémico en el Perú. La implementación de nuevas secuencias de pulsos para facilitar este estudio será necesario. [1] H. Maruenda, M del L. Vico, J.E. Householder, J.P. Janovec, C. Cañari, A. Naka, A.E. Gonzalez, Food Chem., 138, pp. 161–167, May 2013. [2] T. L. Palama, I., Fock, Y. H. Choi, R. Verpoorte, and H. Kodja, Phytochemistry, 71, pp. 567–573, Apr. 2010. [3] Arana, V. A., Medina, J., Alarcon, R., Moreno, E., Heintz, L., Schäfer, H., & Wist, J. Food Chem, 175, 500-506. Jan. 2015. [4] B. C. Galarreta, M. Tabatabaei, V. Guieu, E. Peyrin, and F. Lagugné-Labarthet. Anal. Bioanal. Chem., 405, 5, pp. 1613–1621, Feb. 2013. [5] A. Rhouati, C. Yang, A. Hayat, and J.-L. Marty. Toxins, 5, 11 pp. 1988–2008, Nov. 2013. [6] C. Yang, Y. Wang, J.-L. Marty, and X. Yang. Biosens. Bioelectron., 26, 5, pp. 2724–2727, Jan. 2011. [7] F. Hausch. ” Biochim. Biophys. Acta, vol. 1850, no. 10, pp. 2035–2040, Oct. 2015. [8] C. M. Ünal and M. Steinert. Biochim. Biophys. Acta, vol. 1850, no. 10, pp. 2096–2102, Oct. 2015. [9] C. Schiene-Fischer. Biochim. Biophys. Acta, 1850, 10, pp. 2005–2016, Oct. 2015. [10] A. Moro, F. Ruiz-Cabello, A. Fernández-Cano, R. P. Stock, and A. González. EMBO J., 14, no., pp. 2483–2490, Jun. 1995. [11] P. J. B. Pereira, M. C. Vega, E. González-Rey, R. Fernández-Carazo, S. Macedo-Ribeiro, F. X. Gomis-Rüth, A. González, and M. Coll. EMBO Rep., 3, 1, pp. 88–94, Jan. 2002. [12] P. R. Orrego, H. Olivares, E. M. Cordero, A. Bressan, M. Cortez, H. Sagua, I. Neira, J. González, J. F. da Silveira, N. Yoshida, and J. E. Araya. PLoS Negl. Trop. Dis., 8, 1, p. e2676, 2014.